Microbiologie cellulaire et physique de l'infection

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ArfGAP1 restricts Mycobacterium tuberculosis entry by controlling the actin cytoskeleton
Oligomannose-Rich Membranes of Dying Intestinal Epithelial Cells Promote Host Colonization by Adherent-Invasive E. coli
Biomechanical control of lysosomal secretion via the VAMP7 hub: a tug-of-war mechanism between V ARP and LRRK1
Rv0613c/MSMEG_1285 Interacts with HBHA and Mediates Its Proper Cell-Surface Exposure in Mycobacteria
Premature termination codon readthrough in human cells occurs in novel cytoplasmic foci and requires UPF proteins
Role of Hydrophobins in Aspergillus fumigatus
Microscopie : Une nouvelle approche plus complète
Standardized Nanomechanical Atomic Force Microscopy Procedure (SNAP) for Measuring Soft and Biological Samples
Ezrin enhances line tension along transcellular tunnel edges via NMIIa driven actomyosin cable formation
Strength of Neisseria meningitidis binding to endothelial cells requires highly-ordered CD147/β2-adrenoceptor clusters assembled by alpha-actinin-4
Alterations of the Coxiella burnetii Replicative Vacuole Membrane Integrity and Interplay with the Autophagy Pathway
CLAFEM: correlative light atomic force electron microscopy
Nous déclinons notre recherche suivant deux grands axes incluant des développements technologiques et une utilisation de différents systèmes expérimentaux permettant d’aborder plusieurs aspects impliqués dans les stades précoces de l’infection
Nous développons une approche inter-disciplinaire

Notre hypothèse de travail propose que les propriétés viscoélastiques des membranes biologiques participent à la régulation de la mise en place des complexes de signalisation cellulaire en réponse à un stimulus. Le stimulus que nous choisissons est l’interaction hôte-pathogène qui présente l’intérêt d’exacerber la réponse de la cellule. La voie de signalisation est celle de l’activation de l’autophagie en réponse à l’infection. La méthodologie que nous déployons est basée sur une approche corrélative entre spectroscopie de force et microscopie en super-résolution photonique et électronique.

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Membres du laboratoire

Vincent DUPRES

Maître de Conférence – Université de Lille

Ghaffar MUHARRAM

Associate professor/chair of excellence – University Lille 2/INSERM
Study autophagy-associated cellular responses to norovirus infection in macrophages related to Crohn-like inflammation.

Elisabeth Werkmeister

Ingénieure de Recherche – CNRS
Microscopie photonique de super-résolution et analyse d’images.

Sébastien JANEL

Ingénieur de Recherche – CNRS
Microscopie à force atomique

Ryohei Ueno

Post Doc @ LIMMS

Antoine DUJARDIN

Doctorant
Analyse multi-échantillon et multi-modale d’échantillons biologiques par AFM

Joelle Warein

Technicienne – Institut Pasteur de Lille
Responsable de la culture cellulaire

Hatice Temel

M2 Medicine and Biological Physics Univ Lille

Ayda Houssayani

M2 Medicine and Biological Physics

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Nos réseaux

GDR: Microscopie et imagerie du vivant - Physique de la cellule au tissus - Cosm’actif

Eu cost: afm4nanomed&bio - transautophagy - moebieu

Eu itn (H2020 marie-curie prgm): phys2biomeb

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